Zusammenfassung
Vermutlich sind alle lebenden Zellen tastempfindlich. Berührt man die Plasmamembran einer Zelle, kann man intrazelluläre Reaktionen messen. Die Zelle reagiert mit Änderungen des Membranpotenzials, mit einem kurzzeitigen Anstieg der cytoplasmatischen Calciumkonzentration oder mit anderen Lebenszeichen. Einer der Gründe für die allgemeine Empfindlichkeit lebender Zellen für mechanische Reize liegt in der Notwendigkeit, das Zellvolumen zu regulieren. Bei jeder Änderung der Tonizität der umgebenden Flüssigkeit ändert sich das Zellvolumen durch Aufnahme oder Abgabe von Wasser, und diese Änderung muss umgehend durch robuste Mechanismen der Volumenkompensation rückgängig gemacht werden. Die Volumensensoren der Zellen sind Transportproteine, die durch die Dehnung der Plasmamembran reguliert werden, beispielsweise Ionenkanäle, die sich bei Dehnung öffnen. Man stellt sich diesen Vorgang so vor, dass die gedehnte Plasmamembran einer schwellenden Zelle einen mechanischen Zug auf mechanosensitive Ionenkanäle ausübt, und dadurch die Kanalpore aufzieht. Der Kanal leitet dann Ionen über die Zellmembran, Wasser kann durch Aquaporinkanäle folgen, und das Zellvolumen wird korrigiert. Nicht nur die Volumenregulation, auch viele andere zelluläre Vorgänge werden gesteuert, indem mikroskopische Kräfte auf die Konfiguration von Membranproteinen einwirken. Eine ganze Reihe unterschiedlicher Ionenkanäle wird in tierischen Zellen durch solche mechanischen Reize geöffnet. Dazu gehören die Piezokanäle, einige TRP-Kanäle (TRP: transient receptor potential) sowie TMC-Kanäle (TMC: transmembrane channel-like) und einige Degenerine. Der genaueste Blick auf die Steuerung von mechanosensitiven Ionenkanälen bei Tieren ist beim Fadenwurm Caenorhabditis elegans gelungen. C. elegans lebt im Boden und bewegt sich zwischen den Bodenpartikeln umher auf der Suche nach Bakterien, seiner Hauptnahrung. Berührungen mit den Bodenbestandteilen werden von dem Fadenwurm registriert und zur Orientierung genutzt. Von seinen insgesamt 302 Neuronen setzt C. elegans mindestens 26 für den Tastsinn im Nasenbereich ein. Vor allem die äußeren und inneren Labialsensillen („Lippen“, ◘ Abb. 4.1, links) sind tastempfindlich und werden beim Vorwärtskriechen zur Bodenerkundung eingesetzt. Dabei stehen dem Wurm zwei mechanische Sinnessysteme zur Verfügung: ein niedrigschwelliger (d. h. hochempfindlicher) Tastsinn und ein hochschwelliger (d. h. weniger empfindlicher) Alarmsinn, der dem Schmerzsinn höherer Tiere vergleichbar ist. Stößt ein Fadenwurm beispielsweise gegen ein hartes Hindernis, werden Nozizeptoren aktiviert und lösen eine nach hinten gerichtete Fluchtbewegung aus. Solches Rückzugsverhalten wird durch den Alarmsinn ausgelöst. Vor allem polymodale Nozizeptoren, in der C.-elegans-Nomenklatur als ASH- und FLP-Neuronen bezeichnet, sind daran beteiligt. Beim eigentlichen Tastsinn, der auf wesentlich schwächere Berührungen ausgelegt ist, reagieren hochempfindliche Neuronen auf Kräfte von weniger als 2 μN, was einer sanften Berührung der Cuticula entspricht. Berührt der Wurm bei seinen Erkundungsbewegungen Bodenpartikel, werden mechanosensitive Tastsinneszellen stimuliert, die dem Tier dabei helfen, sich um Hindernisse herumzutasten. Gut untersuchte Tastsinneszellen bei C. elegans sind die CEP-Neurone (CEP: cephalic, im Kopf gelegen), deren sensorische Cilien eng der Cuticula im Nasenbereich, besonders in den äußeren Lippen, anliegen. Sie sind dort durch einen knopfförmigen Anker mit der Cuticula verbunden (◘ Abb. 4.1) und reagieren schon auf sehr leichte Eindellungen der Cuticula. Genetische Untersuchungen haben gezeigt, dass der Ionenkanal TRP-4 in CEP-Neuronen exprimiert und nötig für die Tastreaktion dieses Neurons ist. Der Kanal wird geöffnet, wenn schwache Berührungskräfte auf die Cilienmembran einwirken, und leitet Na+ und Ca2+ in die CEP-Zelle. TRP-4-Kanäle scheinen den CEP-Neuronen als Sensoren für mechanische Reize zu dienen. Der genaue Öffnungsmechanismus der Kanäle ist noch nicht bekannt.
Access this chapter
Tax calculation will be finalised at checkout
Purchases are for personal use only
Literatur
Weiterführende Literatur
Barth FG (2001) Sinne und Verhalten: aus dem Leben einer Spinne. Springer, Heidelberg
Erickson CJ (1991) Percussive foraging in the aye-aye, Daubentonia madagascariensis. Anim Behav 41:793–801
Hanke W, Dehnhardt G (2016) Vibrissal touch in pinnipeds. In: Prescott TJ et al (Hrsg) Scholarpedia of touch. Atlantis Press, Amsterdam
Lechner SG, Lewin GR (2013) Hairy sensation. Physiology 28:142–150
Levy G, Hochner B (2017) Embodied organization of Octopus vulgaris morphology, vision, and locomotion. Front Physiol 8:164
Ranade SS, Syeda R, Patapoutian A (2015) Mechanically activated ion channels. Neuron 87:1162–1179
Sawyer EK, Catania KC (2016) Somatosensory organ topography across the star of the star-nosed mole (Condylura cristata). J Comp Neurol 524:917–929
Schafer WR (2015) Mechanosensory molecules and circuits in C. elegans. Pflugers Arch – Eur J Physiol 467:39–48
Walcher J, Ojeda-Alonso J, Haseleu J, Oosthuizen MK, Rowe AH, Bennett NC, Lewin GR (2018) Specialized mechanoreceptor systems in rodent glabrous skin. J Physiol 596:4995–5016
Woo S-H, Lumpkin EA, Patapoutian A (2015) Merkel cells and neurons keep in touch. Trends Cell Biol 25:74–81
Zitierte Literatur
Bai L, Lehnert BP, Liu J, Neubarth NL, Dickendesher TL, Nwe PH, Cassidy C, Woodbury CF, Ginty DD (2015) Genetic identification of an expansive mechanoreceptor sensitive to skin stroking. Cell 163:1783–1795
Barth FG (2004) Spider mechanoreceptors. Curr Opin Neurobiol 14:415–422
Barth FG (2014) The slightest whiff of air: airflow sensing in arthropods. In: Bleckmann H, Mogdans J, Coombs SL (Hrsg) Flow sensing in air and water. Springer, Heidelberg, S 169–196
Barth FG (2016) A spider’s sense of touch: what to do with myriads of tactile hairs? In: von der Emde E, Warrant E (Hrsg) The ecology of animal senses. Springer, Heidelberg, S 27–57
Bokiniec P, Zampieri N, Lewin GR, Poulet JFA (2018) The neural circuits of thermal perception. Curr Opin Neurobiol 52:98–106
Catania KC (1999) A nose that looks like a hand and acts like an eye: the unusual mechanosensory system of the star-nosed mole. J Comp Physiol A 185:367–372
Catania KC (2019) All in the family – touch versus olfaction in moles. Anat Rec 303:65–76
Dhaka A, Viswanath V, Patapoutian A (2006) TRP ion channels and temperature sensation. Annu Rev Neurosci 29:135–161
Gnatzy W, Schmidt K (1971) Die Feinstruktur der Sinneshaare auf den Cerci von Gryllus bimaculatus Deg. (Saltatoria, Gryllidae). I. Faden- und Keulenhaare. Z Zellforsch 122:190–209
Horch KW, Tuckett RP, Burgess PR (1977) A key to the classification of cutaneous mechanoreceptors. J Invest Dermatol 69:75–82
Humphrey JAC, Barth FG (2008) Medium-flow sensing hairs: biomechanics and models. Adv Insect Physiol 34:1–80
Kang L, Gao J, Schafer WR, **e Z, Xu XZS (2010) C. elegans TRP family protein TRP-4 is a pore-forming subunit of a native mechanotransduction channel. Neuron 67:381–391
Keil TA (1997) Functional morphology of insect mechanoreceptors. Microsc Res Tech 39:506–531
Kuehn ED, Meltzer S, Abraira VE, Ho C-Y, Ginty DD (2019) Tiling and somatotopic alignment of mammalian low-threshold mechanoreceptors. Proc Natl Acad Sci U S A 116:9168–9177
Lewin GR, Moshourab R (2004) Mechanosensation and pain. J Neurobiol 61:30–44
Li L, Rutlin M, Abraira VE et al (2011) The functional organization of cutaneous low-threshold mechanosensory neurons. Cell 147:1615–1627
Miller JP, Krueger S, Heys JJ, Gedeon T (2011) Quantitative characterization of the filiform mechanosensitive hair array on the cricket cercus. PLoS One 6:e27873
Perkins LA, Hedgecock EM, Thompson JN, Culotti JG (1986) Mutant sensory cilia in the nematode Caenorhabditis elegans. Dev Biol 117:456–487
Roudaut Y, Lenigro A, Coste B, Hao J, Delmas P, Crest M (2012) Touch sense: functional organization and molecular determinants of mechanosensitive receptors. Channels 6:234–245
Salomon F-V, Geyer H, Gille U (2015) Anatomie für die Tiermedizin. Enke, Stuttgart
Schafer WR (2015) Mechanosensory molecules and circuits in C. elegans. Pflugers Arch – Eur J Physiol 467:39–48
Wessberg J, Olausson H, Fernström KW, Vallbo AB (2003) Receptive field properties of unmyelinated tactile afferents in the human skin. J Neurophysiol 89:1567–1575
Woo S-H, Lumpkin EA, Patapoutian A (2015) Merkel cells and neurons keep in touch. Trends Cell Biol 25:74–81
Zimmerman A, Bai J, Ginty DD (2014) The gentle touch receptors of mammalian skin. Science 346:950–954
Author information
Authors and Affiliations
Corresponding author
Rights and permissions
Copyright information
© 2021 Springer-Verlag GmbH Deutschland, ein Teil von Springer Nature
About this chapter
Cite this chapter
Frings, S. (2021). Der Tastsinn. In: Die Sinne der Tiere. Springer Spektrum, Berlin, Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-662-63233-8_4
Download citation
DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-662-63233-8_4
Published:
Publisher Name: Springer Spektrum, Berlin, Heidelberg
Print ISBN: 978-3-662-63232-1
Online ISBN: 978-3-662-63233-8
eBook Packages: Life Science and Basic Disciplines (German Language)